Количествен анализ на глюкоза - Референтен химик 21

Количествено определяне на въглерод и водород, което трябва да се извършва в съответствие с резултатите от качествен анализ на глюкозата се извършва винаги в същото време, често с помощта на класически метод Liebig е както следва. [C.173]

През последните години, благодарение на използването на ензими функция на йон-селективна електроди могат значително да се разшири и да ги направи подходящи за бързо клиничен анализ на глюкоза, карбамид, аминокиселини и други метаболити. Тези електроди се наричат ​​ензимни електроди, или електрохимически сензори. Създаване на електроди с тези свойства е възможно, тъй като броят на силно специфични ензими, т.е.. Е. способност да катализират превръщането на едно вещество на стотици и дори хиляди вещества близо химически характер. Ако, например, ензимът катализира реакцията. при което промените на рН на средата, рН-чувствителен електрод. филмирана гел, или полимер, съдържащ този ензим, позволява количествено определяне на само на веществото, което се превръща под действието на ензима. От уреа в присъствието на уреаза ензимни МН + йони се образуват. Ако йон-селективен електрод. чувствителен йон NH. покриване на филм. съдържащ уреаза, след това с възможност да се определи количествено урея. Ензимни електроди - един пример за увеличаване на практическото използване на ензими в науката и техниката. [C.138]

Всички инжекционни лекарства преди стерилизация трябва да бъдат подложени на химическа контрол за автентичност, и присъствието на аналитичен химик в аптека - и количествен anali-ай. новокаин разтвор. атропин сулфат. калциев хлорид. глюкоза и разтвор на натриев хлорид изотопен при никакви обстоятелства е задължително да бъде качествено (идентификация) и количествен анализ. [C.305]

Молекулното тегло на глюкоза. Има много различни методи за определяне на молекулното тегло на органичен твърдо вещество. Най-често на молекулното тегло се определя чрез пара плътност на веществото от cryoscopic метод. Тези методи са научили учениците в хода на физиката и количествен анализ. За да се избегнат ненужни повторения, ние няма да се опише тези техники тук, но само ще отбележим накратко, че молекулното тегло на глюкоза, както е определено от cryoscopic метод. е равна на 180. [c.176]

На глутамин тъканна селективност на сензора може да се съди по резултатите от количествен анализ на тестовите проби от гръбначно-мозъчната течност (CSF) [7]. проби ОСР след преминаване през катионен обменник за отстраняване на фон амоняк, който може да повлияе на сигнала на биосензора, концентрацията на глутамин може да бъде измерена с добра точност и възпроизводимост в рамките на клинично важен диапазон. В тези измервания, буферен разтвор работа да се прилага за потискане на намеса йодоацетамид реакцията, включваща глюкоза. Очевидно, в резултат гликолиза бъбречно-клетъчен от глюкоза продукция киселина. който влияе на потенциала на рН-чувствителен сензор амоняк. Йодоацетамид е известно като инхибитор на гликолиза, и е установено, че ефективно да инхибира чувствителността на глутамин биосензора за гликоза. Определяне на глутамин в CSF може да се извършва в обхват на концентрация от 2.2-10 -1,29-10 M със средно относително стандартно отклонение от 5.6%. Такъв сензор може да бъде полезно, например, при синдрома на проучване Reye, където високо ниво на глутамин се разглежда като диагностичен критерий. [C.37]

Тъй като ние не знаем ненормално единица се намира къде по веригата. Предполагаме, като първо приближение. тя е също толкова вероятно да бъде във всяко положение. След това, когато ненормално една връзка на молекула (несигурност метилиране) ще спре ензимната хидролиза на средната стойност в средата на всяка верига. Това означава, че добивът на получения глюкоза е 50% от общото съдържание в пробата. Това несъответствие с очакваните за обикновен полизахарид (100%) резултатите, е възможно да се открият дори най-трудните методи за анализ. Действителната точността на определяне на глюкоза по стандартни методи е с няколко процента. Кажете внимателно 5%. Това означава, че ако се глюкозата в количествен добив на ензимната хидролиза на полизахарида, и като се вземат предвид грешка 5%, може да се каже, че най-малко. 90% от полимерните молекули в пробата има редовен структура и не съдържат анормални единици. По този начин. във връзка с нашия пример на редовен, създадена чрез метилиране, дори и да не се позове на правото, което има молекула полизахарид. не съдържащ всяко анормално ниво. и редовността монтират с помощта ензимна хидролиза, която ни позволява да кажем, че най-малко 90% от всички редовни молекули примерни в тесния смисъл на думата. Количествен разлика, но очевидно тя се превръща в качество. [C.105]

За количествен анализ на смес от захари, ние разработихме борохидрид-nolyarimetrichesky метод. Този метод може да се използва, например, за анализ на смеси от захароза и глюкоза. Не е като алдехидна група. Захароза не реагира с натриев borgidri-къща или калиев по този начин. неговото въртене при обработката на този реагент не се променя. Глюкоза същото съгласно борохидрид възстановена сорбитол, оптичното въртене на която е по същество равна на нула. По този начин. оптична ротация на сместа да се възстанови същото количество завъртания на захароза и глюкоза, и оптично въртене след възстановяването се създава само със захароза. Две измервания на въртене (преди и след обработка борохидрид) осигурява необходимите данни за изчисляване на състава на сместа. Малко по-различно конструирани анализ на смес от глюкоза и фруктоза. Тук, както на захарта може да се възстанови борхидрид. Възстановяването се извършва в нейния количествен версия, тя позволява да се определи сумата на захар. Съотношението на глюкоза и фруктоза в сместа се определя от въртенето. Относителната грешка в тези определения с 1 - 3%. [C.319]

За количествен анализ на захари смес предназначена borgidridpo поляризация-метричен метод. която може да бъде определена смес от захароза и глюкоза, глюкоза и фруктоза. [C.352]

Се нагрява до 60 ° С в колоната (45x1,5 cm), която преди това се излива в до ниво от 43 cm Whatman марка целулозен прах СР-12 (виж фиг. Sec. И В, хроматография върху целулоза), използван за разделяне и количествен анализ на захариди, изработена от 4-15 глюкозни единици [24]. Подвижната фаза се изпомпва от устройството за елуиране на градиент. който се състои от конична колба от 250 мл, изпълнен [c.84]

Тя е много по-трудно да се определи дори най-простата формула на органичната материя. не се разграничи в разтвор на йони, като например глюкоза VOS, 20b за това, което трябва да се направи не само качествено, но и количествен анализ. [С.16]

Щам и сътрудници [48, 50] са доказали връзка багрилото на влакното, оцветяване на частично хидролизиран целулозен прах Remazolovym Brilliant Blue R и подлагане на микробиологично гниене по Se11i1otopaz is1a. Те успя изолиране на цвят разтворим продукт на разграждане на целулозата и докаже хроматографски анализ. е хомогенна субстанция и след пълна хидролиза със сярна киселина, получена от тях глюкоза. След хидролизата на обагрени целулоза се изолира хомогенна съединение. съдържащ 1 мол на багрило и глюкоза. Тези съединения се подлагат на изчерпателен метилиране с метилйодид и сребърен окис в диметилформамид и след това връзката багрилото се хидролизира с основа, и метилглюкозид - киселина. В сравнение със синтетичен метилглюкоза това показва, че глюкозата е заместен в позиция 2 и 4. пълен количествен анализ показа, че заместване на хидроксилната атом е 60%, и в двата края на веригата, 20% [534]. [C.317]

Глюкоза оксидаза се получава в промишлен мащаб и се използва по-специално за количествен анализ на глюкоза в смеси от захари. Важно свойство е способността на ензима в неговия активен група - флавин коензим - директно реагира с молекулен кислород. [C.207]

Влиянието на структура и полярност NF разделяне селективност. Открихме, че най-подходящ за анализ на NF феноли. различаващи брой на въглеродните атоми в страничната верига. са Апиа -band и L диметилполисилоксан, и да се разделят в зависимост от степента на влияние на пространствено пречене на групата ОН - или еритритол etilenmerkapto-а-глюкоза. Необходимостта от калибриране за количествен анализ с откриване чрез топлопроводимост. [C.137]

Количествен анализ се извършва чрез реакция с гликозиди антрон след елуиране от хроматограмата и разцепването на глюкоза. [C.600]

Превръщането на фибриногена във фибрин се осъществява чрез действието на протеолитичен ензим тромбин, който при нормални условия преди активирането е в плазмата във формата на неговия предшественик - протромбин. Първо протромбиновото и тромбин се изолират в пречистена форма Sigersom и сътр. [160] Понастоящем за получаване на силно пречистени препарати на протромбина и тромбин, използвани по-добри методи [161-163]. Лами и VQ [1641 имаше дълбок физикохимични изследване на протромбиновото протромбиновото молекулно тегло, в зависимост от техните данни, е 62 700. Съгласно количествен анализ [165] протромбин на въглехидратна част съдържа 6.5% хексози, 1.7% хексозамини, много малко пентози и не съдържа шестнадесетичен-Ronova киселини. Превръщането на протромбина в тромбин може да бъде активиран по два начина [159] 1) соли във високи концентрации (25% разтвор на натриев цитрат) и 2) добавки от фактори тъкан и плазма, протромбин до разтвори. Молекула, способна на тромбин агрегация, в резултат на широко вариращи количества от неговото молекулно тегло. докладвани в литературата. Очевидно е, че минимално тегло тромбин мономер молекулно е приблизително 8000 [159, 166]. Lorand и сътр. [167] показват, че активирането на протромбиновото 25% натриев цитрат от протромбин се разцепва въглехидрати. В ранните етапи на процеса на активиране на протромбиновото 40-60% въглехидрати и за същото количество азот е направен разтворим в трихлороцетна киселина. Броят на хексоза и хексозаминовия, които са разтворими в трихлороцетна киселина при активирането на протромбин. също представляват 40-60%. Милър и Sigers] 168] изследва въглехидратна част. отцепва от протромбин при активиране. Тромбинът активира смес от Утаеният амониев сулфат. и супернатантата се отделя въглехидратна част. При хидролизата на въглехидрати фракция е намерено само глюкоза в хидролизата. Тъй като не хексозаминовия не може да бъде намерен, че се предполага, че в процеса на активиране на протромбиновото хексозаминовия може да разцепват ензимно от хексози. [C.253]

Правилно избран порьозност на гранулите и внимателно проектирани експериментални условия. Тя може да бъде разделена много подобни молекули, или, напротив, молекулите, които принадлежат към съвсем различни класове. Особено трудно да се отделят смес от различни вещества. но в тези условия не е толкова важно, висока скорост на потока. Тъй като малки колони обикновено получени количествени добиви, след разделяне на компоненти на неприпокриващи пикове може да бъде подложен на количествен анализ, използвайки неспецифични методи. Това дава възможност да се раздели. и след това се обезсолява Sephadex 0-15 серия от прости захари. RA-finozu например, малтоза и глюкоза [28]. Това разделение се основава. обикновено на разликите в молекулна маса аналити. Въпреки това, понякога се дължи на други причини. причинява задържане на определени молекули в колоната, например чрез адсорбция на полярен разтвореното вещество от неполярен разтворител. [C.223]

В количествен анализ на алостеричен регулиране от АТР, ADP и AMP в сурови екстракти, съдържащи glyukozofosfatizomerazu. важно да се избегнат значителни промени в концентрацията на F-6-P, в резултат на изомеризация. Към това може да се добавя разтвор на 0.2 М глюкоза се неутрализира -6-фос-воал (G-6-P) и 20 единици. G-6-P-изомераза за 1 мл. В рамките на 1 час при стайна температура с 0.05 М ще бъде в разтвор F-6-Р и 0.15 М G-6-P. За международна единица приема количеството ензим. който фосфорилира 1 микромол F-6-P в 1 мин при условията, описани по-горе при 25 ° С [DAz4o-L2-6,22-10 = (микромола 1 мл) = -2 микромола на кювета]. [C.398]

Ензимен метод имунологичен тест. Добави 10-20 г проба (буфер. Серум или цяла кръв) за 1 мл ензим реагент (получен в 0.1 М натриев фосфат буфер. РН 7,0 и съдържат 0,2 мола натриев хлорид, 0.2-1, 0 мг конюгат [теофилин - пероксидаза] 100 мг глюкоза 2 г овце IgG не-имунната). Получената смес се потапя област на тест лентата (4x90 mm), съдържащ имобилизирана анти-теофилин (30 г / см), и разтворителят се оставя да се повиши поради капилярните сили към срещуположните крайни ивици (отнема 10 минути). Трансфер на лентата в разработчика (получен от 0.01 М натриев фосфат буфер. РН 7,0, съдържащ в 1 литър от 0.02 мола на натриев хлорид, 0,5 г Тритон QS-44, 400 мг 4-хлоронафтол 0,05 мол глюкоза 2 г от говежди серумен албумин). След 5 минути на хартия се появява синьо оцветен област под формата на плоска лента или ракети. Височина оцветена област пропорционална на концентрацията на анализираното вещество. За количествен анализ, калибрационна крива горе. отразяваща зависимостта на височината на цветен ръб от концентрацията на теофилин. [C.135]

Без да навлизаме в подробности, на количествено-широко ензим-съдържащи проводими сензори няколко разновидности, използвани в медицината, за да се определи съдържанието на глюкоза. Въз основа на тях, той ще бъде разработена от няколко устройства, като евтини, точни и надеждни средства за ин виво тестове. Смята се, че основната употреба те ще намерят в регулацията на кръвната захар при пациенти с диабет. Недостатъчно прецизен контрол на нивата на захарта в тази болест, като че ли води до развитието на дългосрочни, животозастрашаващи странични ефекти на диабет. Използване сензори позволяват близо управляваща схема в апарата от изкуствен панкреас. [C.19]